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microkit: medios de cultivo informacion de medios de cultivo para microbiologia menú ir al contenido inicio contacto medios de cultivo microbiologia aguas microbiología alimentos microbiologia cosmeticos microbiologia medicamentos microbiologia superficies total charcoal microkit® plate count agar deja una respuesta total charcoal microkit ® plate count agar recuento total optimizado para superficies y en filtración de membrana (m.f.) composición peptomix 25,5 g cloruro sódico 5,0 g fosfato disódico 2,5 g glucosa 2,0 g carbón activado 3,0 g agar-agar 15,0 g (fórmula por litro) ph final: 7,1 ± 0,2 recuento de superficies. flora mixta en envirocount y en desinfectest® con total charcoal agar. véase la distribución contagiosa, aún más patente a la derecha, típica de superficies. preparación disolver 52 gramos en 1 litro de agua bidestilada. calentar y agitar hasta la completa homogeneización. autoclavar a 121 ºc durante 15 minutos. no sobrecalentar. para uso exclusivo en laboratorio. mantenga el bote bien cerrado en lugar seco, fresco y oscuro. agite el bote antes de usar presentación: medio deshidratado, codigo: dmt180 control de calidad del medio realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…) deshidratado: polvo grueso, negro. preparado: estéril, negro mate. control de crecimiento cuantitativo 24-48 h a 37°c aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente 21-28°c aproximadamente) y por siembra en superficie: escherichia coli mkta 25922, excelente. con respecto a pca estandarizado*, recuento >150%. enterococcus faecalis mkta 29212, excelente. con respecto a pca estandarizado*, recuento >150%. staphylococcus aureus mkta 6538p, excelente. con respecto a pca estandarizado*, recuento >150%. pseudomonas aeruginosa mkta 9027, excelente. con respecto a pca estandarizado*, recuento >150%. * el que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. nota : la singular mezcla de peptonas, extractos y demás componentes, ayudada por el efecto neutralizante del carbón (que elimina no sólo conservantes y desinfectantes de la muestra, sino además los metabolitos inhibitorios segregados por las cepas de crecimiento rápido, con lo que las cepas lentas y menos vitales también crecen) permite un crecimiento magnífico de prácticamente cualquier cepa ambiental, incluidas bacterias, levaduras y mohos. la opacidad otorgada por el carbón permite contrastar las colonias con el fondo; y es el factor limitante para que el uso de este medio se haya de restringir a siembras en superficie (control de superficies, filtración de membrana y aislamientos en superficie). esponera & co, técnicas de laboratorio, junio-92. la recuperación con respecto a pca es, como media, del 200% (estudio intercolaborativo, tecnicas de laboratorio, nov.2001) siembra aplicar la placa de contacto sobre la superficie problema, sin restregar, durante un par de segundos. o bien depositar la membrana de filtración sobre la superficie de una placa preparada. o bien aislar colonias sembrando por agotamiento en placa. o bien realizar recuentos de muestras sembrando 0,1 ml en la superficie de una placa y repartiendo homogéneamente con asa de digralsky. incubar en las condiciones adecuadas para la flora buscada. interpretación de resultados contar todas las colonias (filamentosas, mohos; no filamentosas, bacterias y levaduras). el usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. autoclavar antes de desechar a la basura. si desea más información sobre nuestro total charcoal microkit® plate count agar rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . o si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16 esta entrada fue publicada en medios de cultivo el agosto 10, 2018 por microkit . microkit® p/a clostricult deja una respuesta microkit® p/a clostricult clostridium perfringens y sus esporas detección presencia / ausencia (p/a) en 100 (250) ml de agua introducción: medio estéril clostricult cromogénico diseñado por microkit con base tsc y atmósfera de anaerobiosis para detección p/a (o recuento en su formato quanti-p/a ref: qpa-cp) de c.perfringens y sus esporas (el agua vira a negro opaco), que puede elegir en tres formatos diferentes: rpl308 frascos tomamuestras con caldo estéril hidratado y tapón a rosca para añadir en ellos 100 ml de la muestra de agua. cajas 10u ó 9x10u fpa902 viales prepesados de polvo estéril con tapón a rosca para añadir a 100 ml de la muestra de agua (no incluido bote 100 ml vml155 o bolsa standup 100 ml b2787b estériles). cajas 40u ó 10x40u dmti902- botes 100 g de polvo estéril y cucharilla dosificadora para añadir a 100 ml de la muestra de agua (no incluido bote 100 ml vml155 o bolsa standup 100 ml b2787b estériles), bote para 33 test de gran utilidad como screening negativo de muestras rutinarias , al ser un método más fácil de emplear que la filtración de membrana y más fiable (escasez de falsos positivos y de falsos negativos, que en filtración de membrana es de nada menos que el 21% de las muestras analizadas en el mundo, por el estrés provocado durante la filtración). también muy útil para que las potabilizadoras no dejen de analizar en festivos y fines de semana , ya que este método puede ser empleado por personal no especialista en microbiología, el mismo guarda de la depuradora puede hacerlo. la única precaución es que el operario no toque ni el agua ni el polvo con sus manos, para evitar contaminaciones artificiales. recuerde que este parámetro es el único indicador de probable presencia de enterovirus-norovirus y protozoos (cryptosporidium, giardia, entamoeba…) en el agua. modo de empleo: es necesario tratar previamente el agua clorada, mediante tiosulfato sódico, para que las células dañadas subletalmente se recuperen, excepto en los frascos tomamuestras rpl308, que ya lo incluyen. añadir los 100 ml de agua de muestra en el frasco o en el recipiente estéril que se va a utilizar; en el caso de los viales, añadir todo el contenido sobre el agua; en el caso de los botes de 100g, añadir tres cucharaditas rasas sobre el agua y cerrar el bote con la cucharilla dentro para los posteriores usos. voltear sin agitar para homogeneizar sin oxigenar. incubar 18-48 horas a 35-37° c (según nuestras recomendaciones) ó a 42° c (según normas iso). si desea detectar sólo esporas, provocar un shock térmico: calentar la muestra de 100 ml de agua 15 minutos a 70-80 ºc antes de añadir el medio. no es necesario incubar con atmósfera de anaerobiosis, ya que el medio ya la incorpora. la muestra inoculada sirve también de medio de transporte, por lo que no es necesario incubar inmediatamente después de la toma de la muestra, pudiendo transcurrir varias horas entre toma e incubación. para aguas envasadas o de baño, se analizan 50 ml, por lo que debe añadir 50 ml de agua estéril a los 50ml de agua de muestra, o bien emplear el medio a la mitad de la concentración indicada. interpretación de resultados: el viraje a color negro-opaco (aunque sólo sea en el fondo, que es por donde suele empezar a virar) demuestra la presencia de clostridium perfringens y sus esporas en la muestra de agua. es necesaria la ausencia (no viraje), que equivale a 0 ufc/100 ml (ó en 50 ml). sólo en caso positivo debería repetirse la muestra por método cuantitativo si se requiere un recuento concreto, aunque la legislación exige 0 y por tanto no importa si hay 2 ó 950, en ambos casos el agua no es potable. si aún asi debe cuantificar(muestras positivas con clostricult p/a), utilice quanti-p/a-tsc (ref: qpa-cp), que contienen
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